アミノ酪酸には図 1（a）に示すように、5 つの構造異性体が存在し、その内 3 つは鏡像異性体を有しています。その中でも、3-アミノイソ酪酸（BAIBA）は、運動によって筋肉から分泌され、脂肪の燃焼、インスリン、トリグリセリド、コレステロールの調節など、細胞の代謝において重要な役割を担っており、近年ではさまざまな疾患に対する運動効果のバイオマーカーとして注目されています[図 1（b）]。これらの異性体はそれぞれに独自の生理機能を有していることから、各アミノ酪酸の生理メカニズムを詳細に解析するためには、それぞれの構造異性体と鏡像異性体を精密に分離・識別する必要があります。

図 1. （a）アミノ酪酸の構造異性体と鏡像異性体の構造、（b）BAIBA の生理機能の概要図

現在、アミノ酪酸の分離は、高速液体クロマトグラフィー（HPLC）や二次元 HPLC、LC-MS/MS を用いて、キラルカラムで分離されるか、もしくは光学分割ラベル化剤によりラベル化した後、汎用的な C₁₈ カラムで分離されています。しかしながら、8 種類全てのアミノ酪酸の構造異性体と鏡像異性体の一斉分離ならびに、これらを高感度に検出することができる分析法は確立されていませんでした。そこで、弊社が販売している高感度タグを修飾した光学分割ラベル化剤 L-FDVDA（図 2 左）とコスモシール 3C₁₈-EB カラムを用いて、LC-MS により全アミノ酪酸を一斉に分離・識別することができる分析法の確立を試みました。また、アミノ酪酸の一斉分離の研究報告で使用されている L-FDVA（図 2 右）を用いて、各アミノ酪酸の分離挙動と MS 感度を本分析法と比較しました。

図 2. 高感度光学分割ラベル化剤 L-FDVDAと既存の光学分割ラベル化剤 L-FDVAの構造

DL-アミノ酸ラベル化キット（ラベル化剤 : D-FDLDA #19942-74）の各種反応溶液を使用し、L-FDVDA で全アミノ酪酸の構造異性体と鏡像異性体をラベル化した後、コスモシール 3C₁₈-EB カラムを用いて、HPLC と LC-MS で分析しました。

図 3. L-FDVDA を用いたアミノ酪酸のラベル化プロトコル

動画のラベル化法 2 を参考にしてください。

L-FDVDA と L-FDVA でラベル化したアミノ酪酸の全ての構造異性体と鏡像異性体を HPLC で分析し、分離挙動を比較しました。

Conditions
Column	COSMOSIL 3C18-EB 2.0 mm I.D. × 150 mm	Flow rate	0.2 mL/min
Mobile phase	A: Methanol / H2O / Formic Acid = 30 / 70 / 0.1 B: Methanol / H2O / Formic Acid = 60 / 40 / 0.1 B conc. 10% → 35% → 100%（0 → 40 →60 min, L-FDVDA） 30% → 60% → 100%（0 → 40 →60 min, L-FDVA）	Temperature	40℃
		Detection	UV 340 nm

図 4. L-FDVDA と L-FDVA でラベル化した全アミノ酪酸の HPLC クロマトグラム

L-FDVDA と L-FDVA のどちらでラベル化したサンプルにおいても 8 本のピークが確認されました。それぞれのラベル化剤におけるピークが近接したアミノ酪酸の分離度（Rs）を算出したところ、GABA（ピーク 3）と D-BAIBA（ピーク 4）の Rs は 4.35（L-FDVDA）と 1.54（L-FDVA）、D/L-BAIBA（ピーク 4 と 5）の Rs は 1.06（L-FDVDA）と 0.90（L-FDVA）であり、L-FDVDA の方が分離に優れていることが示されました。

o-フタルアルデヒド（OPA）など一部のラベル化剤は安定性が低く、ラベル化したサンプルが経時的に劣化することがあります。複数のサンプルを測定する場合、標識サンプルは長期間安定である必要があります。そこで、L-FDVDA でラベル化した全てのアミノ酪酸の長期安定性を評価しました。全てのアミノ酪酸のピーク面積は、ラベル化反応終了後に分析し得られた値と 7 日経過後も変化していないことから、長期安定性も優れていることが示されました（図 5）。

図 5. ラベル化した各アミノ酪酸の 1 日後と 7 日後のピーク面積値の変化

生体サンプルや食品中には多量のタンパク質や脂質などの成分が含まれています。タンパク質や脂質はカラムに吸着しやすいため、 HPLC で分析する際には、前処理によりこれらの物質を除去する必要があります。

図 6. 血清の前処理方法

図 6 の通りにヒト、マウス、ヤギ血清を前処理した後、L-FDVDA でサンプルをラベル化し、動物種の違いによるアミノ酪酸の含有量の違いならびに既存のキラルラベル化剤 L-FDVA でラベル化したサンプルとの MS 感度を比較しました。

Conditions
Column	COSMOSIL 3C18-EB 2.0 mm I.D. × 150 mm	Flow rate	0.2 mL/min
Mobile phase	A: Methanol / H2O / Formic Acid = 30 / 70 / 0.1 B: Methanol / H2O / Formic Acid = 60 / 40 / 0.1 B conc. 10% → 35% → 100%（0 → 40 →60 min, L-FDVDA） 30% → 60% → 100%（0 → 40 →60 min, L-FDVA）	Temperature	40℃
		Detection	ESI/APCI（DUIS）（positive mode）
		Mode	SIM（m/z: 455.5）
		Injection vol.	5 µL

図 7. （a）L-FDVDA と（b）L-FDVA を用いてラベル化した標準サンプルと血清中のアミノ酪酸の LC/MS クロマトグラム

L-FDVDA でラベル化したサンプルでは、ヒト血清でのみ D 体 L 体両方の BAIBA が検出され、L 体よりも D 体の BAIBA の含有量が高いことが示されました。L-AABA と GABA は全ての動物種で検出されましたが、L-AABA の含有量はヒト＞ヤギ＞マウス、GABA の含有量はマウス＞ヤギ＞ヒトの順に高いことが示されました。以上の結果より、動物種ごとにアミノ酪酸の含有量が大きく異なっていることが示されました。一方、L-FDVA でラベル化したサンプルにおいては、L-FDVDA でラベル化したサンプルよりも全体的にピーク強度が小さくなっただけでなく、L-FDVDA では検出されていたヒト血清の GABA および L-BAIBA のピークは検出されませんでした[図 7（b）]。このことから、L-FDVDA でラベル化することで、感度よく各アミノ酪酸を分離・識別できることが示されました。

ホウレンソウとトマトをメタノールとクロロホルムを用いて前処理した後、L-FDVDA でラベル化し、LC-MS で分析しました。（前処理方法は論文をご参照ください。）

Conditions
Column	COSMOSIL 3C18-EB 2.0 mm I.D. × 150 mm	Flow rate	0.2 mL/min
Mobile phase	A: Methanol / H2O / Formic Acid = 30 / 70 / 0.1 B: Methanol / H2O / Formic Acid = 60 / 40 / 0.1 B conc. 10% → 35% → 100%（0 → 40 →60 min）	Temperature	40℃
		Detection	ESI/APCI（DUIS）（positive mode）
		Mode	SIM（m/z: 455.5）
		Injection vol.	5 µL

図 8. L-FDVDA を用いてラベル化した標準サンプルと食品中のアミノ酪酸の LC/MS クロマトグラム

L-AABA の含有量はホウレンソウの方が高く、GABA の含有量はトマトの方が高いことが示されました。D/L-BAIBA はホウレンソウにのみ検出され、L 体の BAIBA の方が含有量は高いことが示されました。本分析法は、糖尿病や脂質異常症などの診断、代謝メカニズムや植物の免疫システムの解明など医療分野や生化学での研究に利用することが期待できます。

Ozaki M, Shimotsuma M, Kuranaga T, Kakeya H, Hirose T. Analytical Methods. 2023;15:6648-55.

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