1. 均一に懸濁させた Anti-c-Myc-Agarose（#04145-55）0.05 mL をフタ付きポリプロピレン容器（0.5 mL）に分注し、Rinse buffer^＊ 0.4 mL、および c-Myc tagged protein（1 mg/mL）1 μL を添加して静かに転倒攪拌する（室温 2 時間）。
2. 遠心分離（10 秒間）で樹脂を沈殿させた後、Rinse buffer を分注器で吸引除去する。さらに、新たな Rinse buffer 0.4 mL を加えて転倒攪拌（10 秒間）して遠心分離する。（5 回繰り返し）
3. Rinse buffer を濾紙片で十分に吸引除去した Agarose 樹脂、未使用の同 Agarose 樹脂、およびフタ付きポリプロピレン容器（0.5 mL）に分注した c-Myc tagged protein（1 mg/mL）1 μL、の各々に SDS-PAGE 電気泳動緩衝液（+2ME）0.05 mL を添加して煮沸水浴で加熱（5 分間）する。
4. 水冷後に遠心分離（10 秒間）して、各上清 1 μL を SDS-PAGE（10%）で電気泳動する。

＊Rinse buffer : 50mM Tris-HCl pH7.5, 150mM NaCl, 1%(v/v)NP-40, 10mM EDTA, 1mM PMSF, 10μM pepstatin, 20μM leupeptin

Anti-c-Myc-Agarose（左図 ③）に c-Myc tagged protein（左図 ④）を反応させた結果、c-Myc tagged protein は Agarose 樹脂に結合しました（左図 ②）。

c-Myc tagged Protein との反応と同様の手順で c-Myc tagged protein（1 mg/mL）を bacterial lysate 1 μL に変えて操作しました。

不特定多数のタンパク質を含有する bacterial lysate を Anti-c-Myc-Agarose に反応させても、非特異的なタンパク質の樹脂吸着はほとんどおこっていません。

c-Myc タグを挿入したプラスミドを細胞にトランスフェクションしました。その後、本製品を用いて細胞溶解液を免疫沈降し、ウェスタンブロッティングでの検出を行いました。

その他アガロース結合 Tag 抗体はこちら

• Anti-GFP(Rat IgG2a), Monoclonal(GF090R), CC, Agarose Conjugate

未標識の Tag 抗体はこちら

• Anti-GFP(Mouse IgG1-κ), Monoclonal(GF200), AS
• Anti-GFP(Rat IgG2a), Monoclonal(GF090R), CC
• Anti-6xHis(Mouse IgG1-κ), Monoclonal(HI192), AS
• Anti-c-Myc(Mouse IgG1-κ), Monoclonal(MC045), AS